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KB1144|kingmorn|SuperRedGelRed无毒核酸染料10,000×水溶液促销产品

SuperRed独特的油性和大分子量特点使其不能穿透细胞膜进入细胞内,该染料的诱变性远远小于EB。适用于各种大小片段的电泳染色,对核酸迁移的影响小于SYBR Green I。

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kingmorn

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SuperRedGelRed无毒核酸染料10,000×水溶液是一种新型无毒核酸染料,具有独特的油性分子结构,不能穿透细胞膜进入细胞内,不易挥发升华,人体不会吸入,从而最大程度上保证了实验者安全。另外,SuperRed与EB具有相同的光谱特性,故无需改变现有的成像系统即可完美取代EB。 


产品特点: 

1、无毒性:SuperRed独特的油性和大分子量特点使其不能穿透细胞膜进入细胞内,艾 姆斯氏试验结果也表明,该染料的诱变性远远小于EB。 

2、灵敏度高:适用于各种大小片段的电泳染色,对核酸迁移的影响小于SYBR Green I。 

3、稳定性高:适用于使用微波或其它加热方法制备琼脂糖凝胶;室温下在酸或碱缓冲 液中极其稳定,耐光性强。 

4、信噪比高:样品荧光信号强,背景信号低。 

5、操作简单:与EB 一样,在预制胶和电泳过程中染料不降解;而电泳后染色过程也 只需30 分钟且无需脱色或冲洗,即可直接用紫外凝胶透射仪观察。 

6、适用范围广:可选择电泳前染色(胶染法)或电泳后染色(泡染法);适用于琼脂 糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳;可用于dsDNA、ssDNA 或RNA 染色。 

7、与EB有相同的光谱特性,无需改变滤光片及观察装置:标准的EB 滤光片或SYBR 滤 光片都适用,使用与观察EB相同的普通紫外凝胶透射仪观察即可,在300nm 紫外光附近可 得到最佳激发。但是SuperRed不能被488 nm氩离子激光器或相似波长的可见光完全激发,因 此不推荐使用此类激发装置的成像系统。对于此类装置,我们推荐您使用SuperGreen,它和 SYBR Green I的光谱相似,灵敏度相当,但更加稳定。 


使用方法: 

1、胶染法(用法同EB)(推荐方法) 

(1)制胶时加入SuperRed核酸染料(例如:每50 mL 琼脂糖溶液中加入5 μLSuperRed10,000×储液,以此比例类推)。 

(2)按照常规方法进行电泳。


注意事项: 

此方法染色染料用量相对较少。500 μL 染料大约可以做 100 块 50mL 的胶。 

由于SuperRed具有良好的热稳定性,可以在热的琼脂糖溶液中直接添加,而不需要等待 溶液冷却。摇晃,振荡或者翻转以保证染料充分混匀。也可以选择将SuperRed储液加到琼脂 糖粉末和电泳缓冲液中,然后用微波炉或其他常用方式加热以制备琼脂糖凝胶。SuperRed 兼容所有常用的电泳缓冲溶液。 

如果总是看到条带弥散或分离不理想,建议使用泡染法染色以确认问题是否与染料有关。 如果染色后问题依旧存在,则说明问题与染料无关,请尝试:降低琼脂糖浓度;选用更长的 凝胶;延长凝胶时间以保证边缘清晰;改进上样技巧或选择泡染法染色。此方法不适合预制聚丙烯酰胺凝胶,对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法。 


2、泡染法 

(1)按照常规方法进行电泳。 

(2)用H2O将SuperRed10,000×储液稀释约3,300倍到0.1 M NaCl中,制成3×染色液。(例 如将15 μLSuperRed10,000×储液和5mL 1 M NaCl加到45 mL H2O中)。 

(3)将凝胶小心地放入合适的容器中,如聚丙烯容器中。缓慢加入足量的3×染色液浸 没凝胶。室温振荡染色30 min左右,最佳染色时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同而略有 不同。对于含3.5~10%丙烯酰胺的凝胶,染色时间通常介于30 min到1 h,并随丙烯酰胺含 量增加而延长。


注意事项: 用泡染法染色时,染料用量较多。单次使用的染色液可重复使用3次左右。 3×SuperRed染色液可以大量制备,在室温下避光保存直至用完。

特别提醒: 如果您使用的是紫外成像仪,请选择SuperRed;如果您使用激光成像仪或希望在可见光 下观测,请选择SuperGreen。 在极少数情况下,质粒经某些酶切后的 DNA 样品会出现拖尾和分辨率降低,此时建议 同时尝试两种染色方法以决定哪种方法更加合适。 


保存方法:

4℃避光保存,保质期 1 年

仅供研究使用。不用于诊断过程。

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SuperRedGelRed无毒核酸染料10,000×水溶液是一种新型无毒核酸染料,具有独特的油性分子结构,不能穿透细胞膜进入细胞内,不易挥发升华,人体不会吸入,从而最大程度上保证了实验者安全。另外,SuperRed与EB具有相同的光谱特性,故无需改变现有的成像系统即可完美取代EB。 


产品特点: 

1、无毒性:SuperRed独特的油性和大分子量特点使其不能穿透细胞膜进入细胞内,艾 姆斯氏试验结果也表明,该染料的诱变性远远小于EB。 

2、灵敏度高:适用于各种大小片段的电泳染色,对核酸迁移的影响小于SYBR Green I。 

3、稳定性高:适用于使用微波或其它加热方法制备琼脂糖凝胶;室温下在酸或碱缓冲 液中极其稳定,耐光性强。 

4、信噪比高:样品荧光信号强,背景信号低。 

5、操作简单:与EB 一样,在预制胶和电泳过程中染料不降解;而电泳后染色过程也 只需30 分钟且无需脱色或冲洗,即可直接用紫外凝胶透射仪观察。 

6、适用范围广:可选择电泳前染色(胶染法)或电泳后染色(泡染法);适用于琼脂 糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳;可用于dsDNA、ssDNA 或RNA 染色。 

7、与EB有相同的光谱特性,无需改变滤光片及观察装置:标准的EB 滤光片或SYBR 滤 光片都适用,使用与观察EB相同的普通紫外凝胶透射仪观察即可,在300nm 紫外光附近可 得到最佳激发。但是SuperRed不能被488 nm氩离子激光器或相似波长的可见光完全激发,因 此不推荐使用此类激发装置的成像系统。对于此类装置,我们推荐您使用SuperGreen,它和 SYBR Green I的光谱相似,灵敏度相当,但更加稳定。 


使用方法: 

1、胶染法(用法同EB)(推荐方法) 

(1)制胶时加入SuperRed核酸染料(例如:每50 mL 琼脂糖溶液中加入5 μLSuperRed10,000×储液,以此比例类推)。 

(2)按照常规方法进行电泳。


注意事项: 

此方法染色染料用量相对较少。500 μL 染料大约可以做 100 块 50mL 的胶。 

由于SuperRed具有良好的热稳定性,可以在热的琼脂糖溶液中直接添加,而不需要等待 溶液冷却。摇晃,振荡或者翻转以保证染料充分混匀。也可以选择将SuperRed储液加到琼脂 糖粉末和电泳缓冲液中,然后用微波炉或其他常用方式加热以制备琼脂糖凝胶。SuperRed 兼容所有常用的电泳缓冲溶液。 

如果总是看到条带弥散或分离不理想,建议使用泡染法染色以确认问题是否与染料有关。 如果染色后问题依旧存在,则说明问题与染料无关,请尝试:降低琼脂糖浓度;选用更长的 凝胶;延长凝胶时间以保证边缘清晰;改进上样技巧或选择泡染法染色。此方法不适合预制聚丙烯酰胺凝胶,对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法。 


2、泡染法 

(1)按照常规方法进行电泳。 

(2)用H2O将SuperRed10,000×储液稀释约3,300倍到0.1 M NaCl中,制成3×染色液。(例 如将15 μLSuperRed10,000×储液和5mL 1 M NaCl加到45 mL H2O中)。 

(3)将凝胶小心地放入合适的容器中,如聚丙烯容器中。缓慢加入足量的3×染色液浸 没凝胶。室温振荡染色30 min左右,最佳染色时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同而略有 不同。对于含3.5~10%丙烯酰胺的凝胶,染色时间通常介于30 min到1 h,并随丙烯酰胺含 量增加而延长。


注意事项: 用泡染法染色时,染料用量较多。单次使用的染色液可重复使用3次左右。 3×SuperRed染色液可以大量制备,在室温下避光保存直至用完。

特别提醒: 如果您使用的是紫外成像仪,请选择SuperRed;如果您使用激光成像仪或希望在可见光 下观测,请选择SuperGreen。 在极少数情况下,质粒经某些酶切后的 DNA 样品会出现拖尾和分辨率降低,此时建议 同时尝试两种染色方法以决定哪种方法更加合适。 


保存方法:

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